植物组织培养实验报告

发布时间:2023-03-01 01:36:02

(系、部 化学与生物工程学院 专业 生物技术(师范) 年级13 学号17130208 姓名 组别 二组 课程名称 植物细胞工程学 实验日期 2016.3-6 指导老师 实验名称 植物组织培养综合实验 一、 验目的
1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 1.
熟悉MS培养基的组成,掌握贮备液的配制方法 学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法;
掌握超净工作台上的接种方法与注意事项,了解接种室的灭菌方法; 了解组织培养的基本程序;
掌握接种的方法和材料的培养过程;
掌握无菌操作技术,包括外植体除菌和接种技术; 观察外植体的生长状况、染菌状况,剔除染菌外植体; 了解MS培养基和1/2MS培养基的区别 植物细胞的全能性
一切植物都由细胞构成,细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。植物细胞含有全套遗传信息,具有形成完整植物的潜能。 2.
植物细胞表现出全能性的条件 1. 2. 3. 3.
离体状态;
有一定的营养物质,激素和其他外界条件(无菌、温度、pH); 选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型
二、 验原理
无菌条件
把植物的组织、器官等,使其在人工控制的无菌条件下,使植物在人工培养基上繁殖。用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。在组培中外植体都死带菌的,在接种前必须进行表面消毒,这时取得培养成功的最基本和重要的前体。组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的,所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。 4.
脱分化与愈伤组织
已有特定结构与功能的植物组织,在一定条件下,其细胞被诱导改变原来的发育途径,逐步逆转其原有的分化形态,转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。 5.
培养基
植物组织培养常用的培养基为MS培养基。常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固,琼脂本身并不提供任何营养,它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来,仅溶解于热水,成为溶胶,冷却后(40℃以下即凝固为固体状凝胶。琼脂的用量一般在410克/升之间。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式等有关外,还与高压灭菌时的温度、时间、pH值等因素有关,长时间的高温会使凝固能力下降,过酸过碱加之高温会使琼脂发生水解而丧失凝固能力,存放时间过久,琼脂变褐,也会逐失去凝固能力。MS培养基属于富盐平衡培养基,特点是:无机盐浓度较高,元素间的比例适当,离子平衡性好,具有较强的缓冲性,因而在培养的过程中可维持较好的稳定性;营养丰富,在一般培养中无须额外加入复杂的有机成分;微量元素种类全,浓度高。这类培养基是目前使用最广泛的培养基。 6.
生长调节物质
包括天然植物激素额人工激素类似物。植物激素是一类植物自身合成、同时对其生长发育具有重要调节作用的有机化合物。生长调节物质对于离题培养中的细胞分裂分化、器官形成和个体再生等均起着重要而明显的调节作用。一般来说,基本培养基只能保证培养物的生存,维持其最低的生理活动,而只有植物激素的配合使用,才能完成离体培养物中按照需要设计的各个调节环节。常用的植物组培激素种类主要有生长素类、细胞分裂素类、赤霉素。

1
生长素的生理作用主要是促进细胞分裂和生长,有利于外植体脱分化并启动细胞分裂,有利于形成愈伤组织。同时生长素和细胞分裂素的协调作用,对于培养物的形态建立十分必要。在离体培养的分化调节中,生长素促进不定根的形成而抑制不定芽的发生。在液体培养中,生长素还有利于体细胞胚胎发生。常用的生长素有吲哚乙酸IAA、奈乙酸NAA、二氯苯氧乙酸24-D和吲哚丁酸IBA等。在使用24-D时,必须严格控制使用浓度和培养时期,因为高浓度的24-D常常抑制器官的发生,在分化培养时不能使用24-D代替其他生长素。
2
细胞分裂素的主要作用是促进细胞的分裂,调节器官分化,延迟组织衰老,增强蛋白质合成等。此外,它还能显着改善其他激素。离体培养中,细胞分裂素能够促进不定芽的发生,与生长素协调使用能有效调控培养物的生长与分化。常用的细胞分裂素包括6-卞基嘌呤(6-BA)、激动素KT)、异戊烯氨基嘌呤(2ip)、玉米素(ZT)等。
3 赤霉素GA是一类广泛存在于植物体内的激素,目前已发现的天然赤霉素有20多种。自然界植物体内的赤霉素具有促进细胞伸长生长、诱导花芽形成、打破种子休眠及诱导单性结实等生理功能。在离体培养条件下,赤霉素的主要作用时促进细胞伸长生长,与生长素协同作用对形成层的分化具有一定影响,同时还能刺激体细胞胚进一步发育成植株。
三、 验材料、试剂和仪器设备
1. 2. 3.
植物材料:马齿苋、番茄种子诱导的无菌苗、外植体(盘龙参、波斯菊、金叶女贞、黄花苜蓿、菊花、香樟、杜鹃、月季)
实验药品(试剂):甲醛、MS培养基母液(见表1)、蔗糖、琼脂、1%升汞、酒精(75%90%)、NaOHHCl6-BANNA、无菌水;
仪器设备和实验用具:高压灭菌锅、天平、pH计、超净工作台、电炉、酒精灯、镊子、解剖刀、剪刀、烧杯、培养瓶、量筒、烧杯、玻璃棒、广口试剂瓶、牛皮纸、滤纸、培养皿、药勺、支架、打火机等。
四、 验步骤
(
1.
培养基母液的配制(2016/3/4 MS培养基贮备液配制
贮备液III(mg (100×
3.70 16.50 4.40 19.00 1.70 8.3 62 223 86 2.5 0. 25 0. 25
100mL 500mL FeSO4·7H2O Na2EDTA·2H2O 生长调节剂 6-BA NAA 肌醇 烟酸 盐酸硫胺素 盐酸吡哆醇 甘氨酸

50mg 50mg 1000 5 1 5
20 100mL 50mL 278 373
100mL 贮备液I(g(20× MgSO4·7H2O NH4NO3 CaCl2·2H2O KNO3 KH2PO4 KI H3BO3 MnSO4·4H2O ZnSO4·7H2O Na2MoO4·2H2O CuSO4·5H2O CoCl2·6H2O
1 2 3
贮备液II(mg (100× 贮备液IV(mg (100×
称量 溶解 混合 定容
1 每种母液中的几种成分称量完毕后,分别用少量的蒸馏水彻底溶解,然后再将它们混溶,定容。
贮备液III需加热溶解。混合后调至pH5.5,定容,保存在棕色玻璃瓶内。 6-BA1 mg/mL(溶于少量1N盐酸后以蒸馏水定容)。 NAA1 mg/mL(先用少量95%乙醇溶解后以蒸馏水定容)。

植物组织培养实验报告

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