总RNA提取及反转录标准操作流程

一、仪器试剂

Trizol试剂

三氯甲烷（4℃预冷）

异丙醇（4℃预冷）

75%乙醇（DEPC处理水配置）（4℃预冷）

DEPC处理水/RNase free water（反转录试剂盒）

1.5mL无酶EP管

200μL无酶PCR管

冷冻离心机

Nano Drop 2000

反转录试剂盒（Takara RR036A）

二、实验须知

1. 选择人员走动较少的实验台或超净台（无须打开风机）操作。

2. 操作及观摩人员必须佩戴干净的一次性手套及口罩。

3. 尽可能在冰盘上操作。

3. 取EP管时需用镊子，不可以用使用过的手套直接取用。取完EP管后，袋子及时封好。

4. Trizol含剧毒，若溅到皮肤上，请立即用清水冲洗；若溅到眼内，立即大量清水冲洗，并送医就诊。

三、样品处理

1. 组织样品

将组织在液N中磨成粉末后，再以50-100mg组织加入1ml Trizol溶液，混匀，室温放置5min使其充分裂解。

注1：样品总体积不能超过所用Trizol体积的10%。

注2：组织样品收取后应立即处理或液氮冷冻并-80摄氏度保藏。胰腺组织样品因其各种酶含量极其丰富，应尤为注意，研磨过程中注意保持样品低温状态。

2. 贴壁细胞样品

弃去细胞培养皿中培养基，根据下表加入适量 Trizol溶液，吹打混匀，并吸至1.5ml 无酶EP管中，室温静置5min，使细胞充分裂解。

注：加入Trizol溶液后，可将培养皿放入-80℃冰箱，20min后取出化开，通过冻融增加细胞裂解效果。

3. 悬浮细胞

500g×5min离心收集细胞，弃去培养基，约5-10×106细胞加入1mLTrizol溶液，吹打混匀，室温静置5min，使细胞充分裂解。

注：某些酵母或细菌细胞须超声裂解。

4.注意事项

1）样品裂解液可室温存放数小时，-80℃可至少存放一月。

2）若样品含大量脂肪、蛋白、多糖及包外物质，如脂肪、肌肉或块茎植物等样品，可增加一步离心操作，具体步骤如下：

word/media/image1.gif12000g、4℃离心10min，胞外基质、多糖、高分子量DNA将会形成颗粒沉淀于底部，RNA包含于上清中，而高脂样品会在上清液上方形成一层脂肪层。

word/media/image2.gif 移除脂肪层，将澄清的上清液移至新的无酶EP管中。

四、总RNA提取

1.每1mLTrizol溶液加入200μL三氯甲烷，立即盖上盖子，剧烈振荡15s，使水相和有机相充分接触，室温静置3-5min。

2.4℃下，12000g离心15min，液体分为三层，RNA位于上层水相，约占总体积的50%，移至新无酶EP管中（用20-200μL的枪吸取上清，吸上清时，EP管倾斜大约45度，枪头应沿着液面上层吸取上清，枪头不可碰到、吸到中间层）。

3. 加入等体积异丙醇，轻柔地充分混匀（颠倒6-8次，不应用振荡器混匀），室温静置10min。4℃下，12,000g离心10min，可见羽毛状白色RNA沉淀，小心吸出上清。

4. 1mL 75%乙醇洗涤两次（4℃ 7500g离心5min，加入乙醇后只需轻轻颠倒EP管即可，不可使用振荡器震荡或枪头吸打沉淀）。

注：RNA可与75%乙醇中4℃保存一周，-80℃保存一年。

5. 室温干燥室温或真空干燥5-10min，注意不要干燥过分，否则会降低RNA的溶解度。视沉淀量加入适量DEPC水（至少15μL）溶解沉淀，使用Nano Drop测定RNA浓度。

6. 首次提取RNA时须跑胶验证RNA质量，核酸胶配置为：1%琼脂糖/1×TAE缓冲液，取5μLRNA溶液混上0.5μL Loading Buffer，上样跑胶，电泳大概15min，凝胶成像仪上观察RNA条带质量，RNA条带一般为三条，理想的RNA条带为：明亮的28S条带与18S条带，并且28S条带亮度大约为18S条带两倍，微弱或没有5S条带。

五、反转录

用Prime Script TM反转录试剂盒（Takara RR036A）将总RNA反转录成cDNA。

1. 于200μL无酶PCR管中按反应体系配置RT液。

反应体系如下：

2. 轻柔混匀后进行反转录应 ，条件如下：

37℃ 15min （反转录反应）

85℃ 5sec （反转录酶失活反应）

4℃

3. 得到的RT反应液使用Nano Drop测定cDNA浓度，-20℃保存。

QPCR标准操作流程

一、QPCR原理

所谓实时荧光定量PCR技术，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行绝对定量分析或通过内参对比进行相对定量分析的方法。本实验室常采用相对定量进行分析。

1. SYBR Green：

在PCR反应体系中，加入过量SYBR荧光染料，SYBR荧光染料特异性结合DNA双链，发出荧光信号，而游离SYBR染料分子不会发射任何荧光信号，从而保证荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。

2. Ct 值

Ct值（Cycle threshold，循环阈值）的含义为：每个反应管内的荧光信号到达设定阈值时所经历的循环数。

1）荧光阈值（threshold）的设定

PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号，荧光阈值的缺省（默认）设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍，即：threshold = 10×SD cycle 3-15。

2）Ct值与起始模板的关系

每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系，公式如下：

Ct=-1/lg(1+e)×lgX0+lgN/lg(1+e)

n为扩增反应的循环次数，X0为初始模板量，e为扩增效率，常默认为1，N为荧光扩增信号达到阈值强度时扩增产物的量。

二、仪器试剂

SYBR Green PCR Master Mix

引物

ddH2O

cDNA模板

EP管

96孔板

迷你离心机 7200RPM（TOMOS TMC15287）

离心机（湘仪 L530）

QPCR仪（伯乐 Q200）

三、QPCR操作步骤

1. QPCR每孔体系如下：

根据样品数量计算所需体系预混液体积（预混液中不包含cDNA模板），并按组分比例配置，振荡器振荡或用枪吹打均匀，迷你离心机快速离心去除气泡。cDNA模板根据使用量用ddH2O稀释到合适的浓度。

2. 根据实验设计，小心地将体系与cDNA模板加入每孔之内。

例如：两组样品：对照组、处理组，每组样品三个样，检测目的基因表达量，绿色部分表示检测内参基因表达量，蓝色部分表示检测目的基因表达量，96孔板设置如下：

1)样品全都稀释至50 ng/μL，模板量采用100ng，即每孔须加样2μL。

2)预混液1：内参基因18个孔，我们配置20个孔体系，即200μLSYBR Green PCR Master Mix，20μL内参基因上游引物，20μL内参基因下游引物，ddH2O120μL。

预混液2：目的基因18个孔，我们配置20个孔体系，即200μL SYBR Green PCR Master Mix，20μL目的基因上游引物，20μL目的基因下游引物，ddH2O120μL。

注：配置预混液时须适当多配，EP管及枪头易附着预混液引起损失，例如18个孔可配置20-22孔的预混液。

3)根据96孔板设置，分别将预混液加入孔内，同一预混液不需换枪头，注意不要将枪打到第二档，避免产生气泡。

4)根据96孔板设置，分别将样品加入孔内，每一孔都必须换枪头，避免交叉污染。

封上封口膜，用硬卡片左右上下来回刮几下，使封口膜与96孔板贴紧，避免交叉污染，离心机1500g×2min离心。

3. 上QPCR仪进行反应分析，反应程序如下

Step 1 95℃ 30sec

Step 2 95℃ 5 sec

Step3 60℃ 30sec

设置Step2-3 39个循环

Step4 添加溶解曲线

注：该反应程序仅是一般性建议，如有需要请根据具体情况优化。

4. 数据导出，进行定量分析。相对定量分析举例如下：

第一步计算 △Ct=基因Ct值-内参Ct值

第二步计算 △△Ct=处理组△Ct-对照组△Ct

第三步计算 2-△△Ct

最后结果对照是1，处理小于1，说明该基因表达下调。

注：相对定量计算繁琐复杂，初学者需在师兄师姐指导下进行处理数据，熟练后方可独自处理数据。

四、注意事项

1. Mix不要反复冻融，如果经常使用，最好溶解后存放在4℃下。

2.配制稍过量体系，减少加样误差，最好能在冰上操作。

3. 加样时，每管或每孔都要换新枪头，不要连续用同一枪头加样。

4. 所有成分加完后，离心去除气泡。

5. 每个样品至少3个平行孔。

6. QPCR仪昂贵脆弱，首次使用须在师兄师姐指导下使用。

总RNA提取及QPCR标准操作流程